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qPCR引物设计,Primer3 Plus 和 Primerbank 都能搞定! - 实验方法 - 丁香通

 qPCR引物设计流程 - 知乎

作者:苏点点
链接:https://www.zhihu.com/question/270509962/answer/2421919536
来源:知乎
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下面是设计普通引物的原则:

  • 引物长度大于16bp,18~24个核苷酸
  • 引物与靶序列间的Tm值不应该过低。两条引物之间尽量接近,差值不超过4℃;
  • 引物不应该有发夹结构,不能有4bp以上回文序列
  • 两引物间不应有大于4bp以上的互补序列或同源序列,在3’端不应有任何互补碱基
  • 碱基尽可能均匀分布,GC含量在40~60%;
  • 引物尽量不形成二级结构

那qPCR还有什么要求呢?

qPCR除了上述的设计原则之外,还需要多考虑一两个方面,一个就是引物能扩增的目的条带bp数,尽量在200bp以下,当然你选500bp也行,但是效果可能没有那么好。因为qPCR不需要扩增一个基因的全长,只要证明能扩增出与目的基因特异的片段就可以了。所以,qPCR的反应一般采用两步法,因为扩增的片段非常短,速度非常快;只有在两步法不理想的情况下才会选择三步法,但是无论怎样,qPCR反应设置的时间总会比普通PCR会短一些,也没有最后的总扩增过程。

第二点就是考虑引物的特异性和是否自身形成引物二聚体如果特异性不高,就容易扩增出非目的基因的片段,使qPCR出现杂峰;而形成引物二聚体也会出现杂峰。

总之,先用Primer Premier 6设计引物,根据设计的结果筛选出最好的引物;然后去NCBI上反向对引物进行blast,看看是否在特定物种中是特异的;最后要结合实际的qPCR结果分析,由现象反推原因,有问题就要调整好重新实验

在设计qPCR引物时,通常要留意以下几点:

GC含量50%-60%、Tm值50℃-65℃且上下游引物尽量接近、引物末端最好是G或C、引物尽量在目的基因的3’ 端、引物尽量跨越内含子、目的基因是否有不同的剪切变体……

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下面,我们以人的EGFR(Epidermal growth factor receptor,表皮生长受体因子)基因为例,设计一对可以同时扩增其不同剪切变体的qPCR引物!

01

查询基因结果

首先,通过NCBI查询Homo EGFR的基因结构,这里要注意对比基因名称、种属,确保都要一致。

02

确定引物位置

我们的目的是将不同的转录本都扩增出来,所以需要找到这些转录本的同源序列。可以看到,这个基因有多个不同的转录本,第一个转录本的第8、9个外显子区域是所有转录本的同源序列(红框内的绿色小竖线)。只需要将引物设在第8、9个外显子之间就可以了。

03

找到mRNA的序列号 进入GenBank

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